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      細胞培養注意事項(入門篇)

      2025-05-30 瀏覽次數:767

      1

      細胞房和生物安全柜先開紫外照射30min

      作用:對環境滅菌(空氣)。(備注:如果著急,至少也要開15分鐘),在做實驗之前考慮好需要哪些物品。開始照射之前,將所需要用到的物品都放到生物安全柜(或超凈工作臺)里面。常用移液槍或電動移液器等,需要在工作臺上放置一套專用設備。細胞培養箱一般都已經調整好。定期留意一下二氧化碳是否足夠。不夠及時更換。



      2

      顯微鏡需要定期消毒酒精擦拭


      注意:顯微鏡一般都放在細胞房。



      3

      進入實驗之前


      首先給自己帶上拖鞋、頭套,口罩,實驗服,手套(手套帶雙層)。注意:手套要將袖口套進去。實驗服、拖鞋最好是細胞房專用。



      4

      開始操作之前先觀察細胞


      首先觀察細胞培養液的顏色。現在的細胞培養液通常都放有酸堿指示劑(絕大部分是酚紅)。細胞在培養生長過程中,不斷在培養液上清中累積酸性物質,時間長了,培養液變為黃色(同時培養液中營養物質耗盡)。


      其次鏡下觀察細胞的生長狀態是否良好,是否需要傳代。如果生長狀態不好,需要對培養液進行調整(一般是加大血清濃度)。過于密集出現大片融合或太密集而導致細胞脫落,則進行傳代。


      如果長勢良好,且細胞培養液顏色未發生變化,可以酌情進行1/2、 1/3、1/4換液,也可以全換液。總之,視細胞生長情況而定。



      5

      細胞培養預準備


      首先是準備各種溶液:第一是配制溶液過程中要用到的水。水用純水,高壓滅菌之后,再去內毒素。去內毒素方法很多,zui簡單可以放在烘箱180度3小時。或者過去內毒素的柱子后,高壓滅菌。


      第二,各種溶液滅菌:抗生素用去內毒素水配制后,直接過濾除菌(過0.22u濾頭)。可以用一次性無菌注射器過一次性0.22u濾頭。


      現在用的培養液,如果是商業化液體培養基,不用處理。如果是粉末,需要用去內毒素水在生物安全柜(或超凈工作臺)進行配制,再過濾除菌。可以先配濃縮液(如10×),過濾除菌后。再用滅菌去內毒素水稀釋成1×培養液。


      第三,完培的配制:培養液加上合適比例的血清即可。但血清一般保存于-20℃,一般解凍是放在4℃冰箱解凍,耗時長,而且必須解決之后,才能進行培養基的配制。所以要提前幾個小時就將血清從-20℃轉入4℃,以至解凍。當然如果這一次就需要用完的話(是指用這些血清配制的培養液都用完),也可以放到37℃解凍。


      第四,最重要的是保證過程中無菌。液體必須要分裝。無論過程中用到的培養液、胰酶、血清、PBS、生理鹽水、抗生素盡量分裝。分裝是為了防止污染。如果操作有誤,僅能威脅到其中一支,而非整個。


      培養液、血清、PBS、生理鹽水分裝為20mL、50mL或100mL/管胰酶、抗生素可分裝為1mL/管。分裝最好先于細胞操作。


      第五,操作之前,培養液先放到37度的細胞培養箱里復溫。原因:盡量減少對細胞的刺激。低溫對于細胞也是一個刺激因素。


      第六,操作之前,大腦先過一遍此次操作所需要用到的所有用具。將所有用具先放到無菌臺面上。減少拿入拿出的動作,保證無菌。(如果萬一發現少拿了什么,也不要緊,再加上就是。如果是槍頭盒、移液管等用具,最好先用消毒酒精噴一下)。


      第七,操作之前,帶著的手套先噴消毒酒精。然后再進入工作臺。等一分鐘,等手套上的酒精揮發之后再進行操作。



      6

      細胞培養操作過程


      注意無菌。無論哪一管液體,開蓋后盡量立即關上(如果有幾瓶都需要開的,也注意,可以虛蓋)。蓋子向上放。操作時不要從開蓋的容器上方經過。另外,無菌臺面上擺放的各種東西,最好是一字擺開,平行于自己。盡量不要前后重疊。


      細胞操作中所用的所有耗材試劑最好都是細胞培養專用。一般都以一次性耗材居多。1ML槍頭為加長型專用培養槍頭。移液管亦有專用10mL一次性無菌移液管


      1)細胞換液:培養皿/瓶用槍頭或移液管吸去原培養液,加入新培養液。


      (2)細胞傳代:傳代之前先觀察,細胞是否密集,是否開始融合。一般融合達到70-80%就可以傳代。早點傳代也可以。


      如果是貼壁生長的細胞


      1) 培養皿/瓶用槍頭或移液管吸去原培養液;


      2) 無菌PBS或無菌生理鹽水洗滌3次(按培養體積加入);


      3) 加入適量胰酶消化適當時間(一般胰酶為0.25%;9cm/10cm培養皿和25cm培養瓶,一次加入1mL胰酶。消化時間視細胞類型等多種情況綜合考慮,一般如果是細胞株,非原代培養,消化1-2分鐘足矣);


      4) 用槍頭吹打數十次(視細胞類型而定。一般細胞株30-50次吧,耗時一般2分鐘左右);


      5) 加入適量體積完培終止胰酶消化(如果是9cm/10cm培養皿和25cm培養瓶,可以加入1mL完培;現在培養瓶(皿)里有2mL溶液)。


      6) 現在可以將溶液進行分瓶(2mL)。如果是細胞株,直接均分到兩個培養瓶(皿)里。如果是原代培養,可以根據消化時間來對細胞進行分離;因此可以將溶液(2mL)都轉入新的培養瓶(皿)。


      7) 將兩個培養瓶(皿)補足完培到正常體積(果是9cm/10cm培養皿和25cm培養瓶,為5mL完培)。


      8) 鏡下觀察。剛剛傳代細胞還沒貼壁,懸浮在溶液中,呈圓形。一般2h之內會貼壁,如果已經貼壁,根據細胞類型有不同的形態,但通常都不是圓形。


      9) 鏡下觀察無誤之后,再放入細胞培養箱。培養瓶(皿)放入之前,可以用消毒酒精先擦一下。


      10) 傳代之后,最好第二天細胞換液一次。當然,也可以視情況而定。



      7

      收拾工作臺


      物品歸位,倒出垃圾。再開紫外照射30min。



      8

      其它注意事項


      第一,經常觀察。最好是每天都顯微鏡下看一看,確定細胞狀態。然后該換液換,該傳代傳,不用理會的就原樣放回去。如果好幾天都不想理會,可以放完培,或者低血清濃度的培養液,維持細胞生存,但不增殖。


      第二,是否加抗生素。這個視情況而定。細胞培養過程中,是要求盡量少添加不相關的雜質。抗生素對于細胞來說,也是一種負擔。但如果環境比較污染,直接添加好了。好比沒病不用吃藥,感冒了還是要吃藥;嬰兒沒病但還是要打疫苗。


      第三,胎牛血清的解凍。血清一般保存于-20℃,要放在4℃冰箱解凍,耗時長,500mL要好幾個小時,我們經常是頭天離開實驗室之前放到4℃冰箱,過夜。所以經常分裝成10mL或者20mL。這樣,上午放到4℃冰箱,下午就可以用了。


      第四,是否一定要細胞房。以及是否要嚴格的遵守種種器具專用。這個吧,見仁見智。凡所有種種措施及設備都是為了保證培養操作過程中無菌,減少感染的機率;專用試劑耗材保證無菌無內毒素。

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