細胞培養不好怎么辦？

可能原因

1.胰蛋白酶消化過度；

2.支原體污染；

3.培養基pH值過堿（NaHCO3分解）；

4.細胞老化；

5.接種細胞起始濃度太低或太高。

解決方法

1.縮短胰蛋白酶消化時間或降低胰蛋白酶濃度；

2.分離培養物，檢測支原體。清潔支架或培養箱。如發現支原體污染，丟棄培養物；

3.使用無菌醋酸溶液調整pH值或充入無菌CO2；

4.啟用新的保種細胞；

5.調節最佳接種細胞濃度。

可能原因

1.培養液中含鈣,鎂離子；

2.支原體污染；

3.蛋白酶過度消化使得細胞裂解；

4.DNA污染。

解決方法

1.用無鈣鎂平衡鹽溶液洗滌細胞，輕巧吹吸2.細胞獲得單細胞懸液；

3.分離培養物，檢測支原體；

4.DNasel處理細胞。

可能原因

1.由于更換不同培養液或血清；

2.培養液中一些細胞生長必須成分如谷氨酰胺或生長因子耗盡或缺乏或已被破壞；

3.培養物中有少量細菌或真菌污染；

4.試劑保存不當；

5.接種細胞起始濃度太低；

6.細胞已老化；

7.支原體污染。

解決方法

1.比較新培養液與原培養液成分，比較新血清與舊血清支持細胞生長實驗，讓細胞逐漸適應新培養液；

2.換入新鮮配置培養液，或補加谷氨酰胺及生長因子；

3.用無抗生素培養液培養，如發現污染，丟棄培養物；

4.血清需保存在-10到-20℃。培養液需在2-8℃避光保存。含血清*培養液在2-8℃保存，需在1周內用完；

5.增加接種細胞起始濃度；

6.換用新的保種細胞；

7.分離培養物，檢測支原體。清潔支架和培養箱。如發現支原體污染，丟棄培養物。

可能原因

細胞本身的狀態

1. 細胞傳代次數多，細胞老化；

2. 細胞的接種量：接種量過低，細胞生長緩慢；

3. 細胞傳代時間過晚：細胞中毒，影響傳代后的細胞生長；

4. 胰酶消化時間過長或過短：時間過長，細胞死亡；時間過短，細胞未*分離而成團，細胞死亡；

5. 細胞的凍存與復蘇：慢凍速溶。

污染

1. 支原體污染；

2. 霉菌污染。

培養基或血清

1. 更換血清或培養基之前未進行驗證；

2. 選擇的培養基是否合適；

3. 培養基配制是否合適；

4. 培養基配制是否準確無誤。

培養環境

1. CO2供應是否正常；

2. 培養箱或搖床溫度控制是否正確。

解決方法

根據以上四個方面的可能原因，做出針對性的解決方案

1.注意細胞的本身狀態：如傳代次數，接種量等；

2.避免產生污染（用正規，合法，可朔源的血清）；

3.要用合適的血清或培養基，最好經過驗證；

4.注意實驗室的環境。

可能原因

1.培養箱內無CO2；

2.培養箱內溫度波動太大；

3.細胞凍存或復蘇過程中損傷；

4.培養液滲透壓不正確；

5.培養液中有毒代謝產物堆積。

解決方法

1.檢測培養箱內CO2；

2.檢查培養箱內溫度；

3.取新的保存細胞種；

4.檢測培養液滲透壓；

5.換入新鮮培養液；